Количественные испытания жидких сред
I.1 Общие положения
Настоящее приложение содержит описание методов количественных испытаний жидких сред, которые могут предоставить дополнительную информацию по сравнению с рабочими методами, описанными в разделе 8. Данные методы применимы главным образом для оценки сред, которые разрабатывают или используют в сравнительных исследованиях.
Качество жидкой среды в том, что касается обеспечения оптимального роста микроорганизмов, наиболее явно проявляется в течение ранней фазы роста микроорганизмов. Анализ продолжительности периода протекания лаг-фазы и роста микроорганизмов в течение ранней стадии лаг-фазы позволяет получить наиболее точную информацию о производительности и селективности целевых и нецелевых микроорганизмов как в испытуемом, так и в эталонном бульоне. Таким образом, если имеется необходимость в обнаружении лишь небольших различий в качестве питательных сред, посев штрихом из жидкой среды на поверхность плотной среды следует проводить после короткого периода инкубирования (например, продолжительностью 6 или 12 ч).
I.2 Метод количественных испытаний неселективных жидких питательных сред при помощи целевых микроорганизмов
I.2.1 Методика
- Отбирают количество пробирок, каждая из которых содержит не менее 10 см среды или 10 см порции из каждой испытуемой партии (см. 3.1.2).
- Используют рабочие культуры (см. 5.4.2.2).
- Проводят инокуляцию целевыми микроорганизмами: испытуемый бульон и плотную эталонную среду инокулируют каждым тест-микроорганизмом; количество клеток должно быть не более 100.
- Инкубирование инокулированных сред проводят в условиях, установленных в конкретных стандартах.
- Готовят достаточное количество разведений из каждой инкубированной среды для достижения количества колоний, которое поддается подсчету (см. 5.4.2.5).
- Отмеренный объем (например, 10 мм) распределяют по поверхности неингибирующей агаровой среды в чашке Петри (см. 7.2.2.1.1).
I.2.2 Подсчет и интерпретация результатов
После инкубирования подсчитывают количество колоний в чашках (см. 7.2.2.1.1 и 7.2.2.1.2). Интерпретация результатов будет зависеть от цели испытания, например, сравнения с предыдущей партией, эталонной средой или эталонным материалом.
Концентрация целевых микроорганизмов в испытуемом бульоне должна быть в диапазоне от 10 до 10 КОЕ/см.
I.2.3 Блок-схема для количественного метода для неселективных жидких питательных сред с применением целевых микроорганизмов
На рисунке I.1 приведена блок-схема для количественного метода для неселективных жидких питательных сред с применением целевых микроорганизмов.
Рисунок I.1 - Блок-схема для проведения эксплуатационных испытаний неселективных жидких питательных сред с применением целевых микроорганизмов (см. J.2.1 и J.2.2)
I.3 Метод количественных испытаний селективных жидких питательных сред при помощи целевых и нецелевых микроорганизмов
I.3.1 Методика
- Отбирают количество пробирок, каждая из которых содержит не менее 10 см среды или 10 см порции из каждой испытуемой партии (см. 3.2.2).
- Используют рабочие культуры, как это описано в 5.4.2.
- Инокуляция целевыми микроорганизмами: инокулируют испытуемый бульон, эталонный бульон и плотную контрольную среду каждым тест-микроорганизмом, количество клеток должно быть не более 100. Плотную эталонную среду используют для подсчета КОЕ в инокуляте.
- Инокуляция нецелевыми микроорганизмами: инокулируют испытуемый бульон, эталонный бульон и плотную эталонную среду каждым тест-микроорганизмом, количество клеток должно быть не менее 1000.
- Инокуляция целевым и нецелевым микроорганизмами для получения смешанной культуры: для испытаний смешанных культур в селективной среде инокулируют испытуемый бульон, эталонный бульон и плотную контрольную среду целевым микроорганизмом (не более 100 клеток) и нецелевым микроорганизмом (не менее 1000 клеток) в одной и той же пробирке или на одной и той же чашке. При испытании смешанных культур распределение инокулята должно проводиться по возможности на слое неселективного агара, что позволит дифференцировать микроорганизмы смешанной культуры (например, агар с MUG для подсчета Escherichia coli или Salmonella spp.). Когда нет возможности различить смешанные культуры на неселективном агаре, необходимо использовать среды с селективным агаром при условии, что их эксплуатационные характеристики были предварительно проверены.