Стандартный рацион вивария
Ингредиент | Масса, г |
Крупа овсяная | 2,5 |
Зерновая смесь | 14,0 |
Хлеб 2 сорт | 4,0 |
Творог | 2,0 |
Рыбная мука | 0,5 |
Мясо 2 категория | 4,0 |
Морковь | 8,0 |
Зелень | 8,0 |
Рыбий жир | 0,1 |
Дрожжи | 0,1 |
NaCl | 0,15 |
Основные нутриенты | |
Белок | 3,69 |
Жир | 1,28 |
Углеводы | 12,42 |
Энергия, ккал | 76,0 |
6.5.2. Исследуемые показатели:
На 1-й, 3-й, 5-й день опыта крыс в/б сенсибилизируют ОВА, а на 21-й день эксперимента вводят дополнительную ("бустерную") дозу антигена, уменьшенную в 10 раз в сравнении с первоначальной. Кормление рационами продолжают до утра 29-го дня эксперимента и затем вводят раствор ОВА в/в, после чего оценивают на протяжении 24 ч тяжесть развивающейся реакции анафилаксии по показателям числа летальных реакций, общего числа судорожных реакций и величины анафилактического индекса. Непосредственно перед введением разрешающей дозы у крыс отбирают 0,1-0,2 мл крови из хвостовой вены для определения уровня специфических антител.
Иммуноферментное определение уровней циркулирующих специфических антител к ОВА проводят согласно. Статистическую обработку результатов проводят согласно U-критерию Фишера для долевых показателей, непараметрическим критериям хи-квадрат и Мана-Уитни с использованием пакетов программ Excel и SPSS 11.5.
6.6. Генотоксикологические исследования ГМО проводятся в эксперименте на лабораторных животных. Оценка потенциальной генотоксичности ГМО включает выявление повреждений ДНК и выявление мутагенной активности в эксперименте in vivo. Метод выявления мутагенной активности основан на учете хромосомных аберраций в метафазных клетках пролиферирующих тканей. Регистрация повреждений ДНК предусматривает оценку целостности структуры ДНК методом щелочного гель-электрофореза изолированных клеток (метод ДНК-комет).
6.6.1. Схема проведения эксперимента
Вид животных | мыши линии С57B1/6 |
Пол | самцы |
Возраст | половозрелые |
Исходная масса тела | 18-20 г |
Количество животных в группе в начале эксперимента | не менее 15 особей в каждой группе |
Распределение по группам | Животных делят на 2 группы: |
Рацион* | Пищевая и биологическая ценность рациона полностью удовлетворяет физиологические потребности животных |
Карантин | не менее 7 дней |
Условия содержания | Животные получают свободный доступ к корму и воде; содержатся в отапливаемом, вентилируемом помещении. |
Продолжительность эксперимента | 30 дней |
Забор материала для исследований | На 30-й день эксперимента |
_______________
* Состав базового рациона приведен в п.6.3.2.
6.6.2. Исследуемые показатели:
1) в основе метода выявления мутагенной активности лежит регистрация видимых структурных нарушений хромосом в клетках костного мозга на стадии метафазы. Анализируют 100 метафаз от каждого животного. Учитывают число одиночных и парных фрагментов, хроматидных и хромосомных обменов, ахроматических пробелов (гепов) и разрывов по центромере, число клеток с множественными повреждениями и клеток с полной деструкцией хромосом. Оценку результатов цитогенетического анализа проводят путем сопоставления долей клеток с хромосомными аберрациями в контрольной и опытной группах.
2) регистрация повреждений ДНК предусматривает оценку целостности структуры ДНК методом щелочного гель-электрофореза изолированных клеток (метод ДНК-комет). Метод основан на регистрации различной подвижности ДНК и возможных фрагментов ДНК лизированных клеток, заключенных в агарозный гель, в постоянном электрическом поле. При этом ДНК мигрирует к аноду, формируя электрофоретический след, напоминающий "хвост кометы", параметры которого зависят от степени поврежденности исследуемой ДНК. Общая схема метода включает получение гель-слайдов (подложки), получение микропрепаратов, лизис, щелочную денатурацию, электрофорез, нейтрализацию/фиксацию, окрашивание и микроскопический анализ.
Микроскопический анализ проводят на эпифлуоресцентном микроскопе с соответствующими для конкретного красителя фильтрами при увеличении 200х-400х. На каждый микропрепарат анализируют не менее 100 "ДНК-комет". Анализ "ДНК-комет" может проводиться визуально или с помощью программно-аппаратного комплекса.
6.7. Исследования репродуктивной токсичности ГМО проводятся в эксперименте на лабораторных животных и включают:
1) изучение влияния на генеративную функцию;
2) изучение эмбриотоксического и тератогенного действий, регистрируемых в пренатальном и постнатальном периодах развития.
6.7.1. Схема проведения эксперимента
Вид животных | крысы линии Вистар |
Пол | самцы, самки |
Возраст | 40-50 дней |
Исходная масса тела | 70-80 г |
Количество животных в группе в начале эксперимента | не менее 50 особей в каждой группе |
Распределение по группам | Животных делят на 2 группы: |
Рацион* | Пищевая и биологическая ценность рациона полностью удовлетворяет физиологические потребности животных |
Карантин | не менее 7 дней |
Начало опытного вскармливания | за 45-50 дней перед первым спариванием |
Условия содержания | Животные получают свободный доступ к корму и воде; содержатся в отапливаемом, вентилируемом помещении. |
_______________
* Состав базового рациона приведен в п.6.3.2.
6.7.2. Исследуемые показатели:
6.7.2.1. Интегральные показатели