Действующий

О Порядке направления биологического материала пациентов со злокачественными новообразованиями для проведения молекулярно-генетических исследований при оказании медицинской помощи в амбулаторных условиях



Таблица 2



Молекулярно-генетические тесты, показания, направляемый материал

Название теста

Цель тестирования

Пациенты, которым показан тест

Пригодные для теста материалы

Тест на определение мутаций в генах BRCA1 и BRCA2 в крови

Отбор пациентов на терапию PARP-ингибиторами, выявление семейных форм рака молочной железы и яичников

Пациентки с раком молочной железы и яичников, в т.ч. с платино-чувствительным рецидивом рака яичников

Цельная кровь в пробирке с ЭДТА

Тест на определение мутаций в генах BRCA1 и BRCA2 в биопсийном (операционном) материале)

Отбор пациенток на терапию PARP-ингибиторами

Пациентки с платино-чувствительным рецидивом рака яичников

Гистологический блок с опухолевой тканью и блок с нормальной тканью, и стекло

Тест на определение мутаций в гене EGFR в биопсийном (операционном) материале

Отбор пациентов на терапию ингибиторами TK EGFR 1-го и 2-го поколения

Пациенты с метастатическим или местно-распространенным немелкоклеточным раком легкого (НМКРЛ)

Гистологический блок и стекло с опухолевой тканью, цитологический материал

Тест на определение мутаций в гене BRAF в биопсийном (операционном) материале)

Отбор пациентов на терапию низко молекулярными ингибиторами мутированного белка BRAF

Пациенты с меланомой IIIC - IV стадии. Пациенты с хирургически удаленной меланомой и метастазами в лимфоузлах (адъювантная терапия)

Гистологический блок и стекло с опухолевой тканью

Тест на определение мутаций генов KRAS и NRAS в биопсийном (операционном) материале

Отбор пациентов на терапию моноклональными антителами

Пациенты с метастатическим колоректальным раком

Гистологический блок и стекло с опухолевой тканью

Тест на определение амплификации гена HER2 методом флюоресцентной гибридизации in situ - FISH

Отбор пациентов на терапию моноклональными антителами

Пациенты раком молочной железы, желудка с положительным ИГХ-тестом на наличие рецепторов HER2 (два плюс)

Гистологический блок и стекло с опухолевой тканью


Требования, предъявляемые к гистологическому материалу,

подготовка материала к исследованиям



Материал должен представлять гистологический блок, залитый в парафин, в пластиковой кассете размером 3 x 4 см.


Температура плавления парафина, применяемого для изготовления блока, не должна превышать 60 град. Цельсия.


Материал должен фиксироваться в 10% нейтральном (рН от 7.0 до 7.6) (забуференном) формалине. Фиксация материала должна быть начата не позднее 1 часа после взятия ткани.


Время фиксации должно определяться типом и размером фиксируемой ткани и не должно превышать 12 - 24 часа для операционного материал, 6 - 8 часов для биоптатов.


Образцы после декальцинации с применением муравьиной или азотной кислоты для молекулярного исследования не пригодны.


Работать в перчатках, внутри вытяжных или ламинарных шкафов, использовать одноразовые инструменты и расходные материалы.


Избегать соприкосновения фрагментов биологического материала друг с другом и с любым другим биологическим материалом.


Материал может быть получен как из первичной опухоли, так из метастазов.


Общий срок хранения фиксированных формалином и залитых парафином образцов ткани (FFPE-блоки) не более 3-х лет при температуре от +15 до +25 град. Цельсия.


По результатам морфологического исследования опухолевые комплексы должны занимать не менее 60% площади ткани в срезе с FFPE-блока, зоны некроза и кровоизлияния в совокупности должны занимать не более 15% площади ткани в срезе с FFPE-блока. В случае, если образец не соответствует хотя бы одному из перечисленных критериев, рекомендуется использовать другой образец.


Анализируемый материал не подлежит использованию при нарушении условий хранения и транспортировки (температура, продолжительность, многократное замораживание-оттаивание).


При подготовке срезов с парафиновых блоков необходимо минимизировать риск кросс-контаминации образцов, для чего необходимо: работать в одноразовых неопудренных перчатках; проводить процедуру в ПЦР-боксе или в ламинарном шкафу; использовать одноразовые лезвия для микротома и стерильные пинцеты; первые два среза с каждого блока утилизировать, а для молекулярного исследования использовать срезы начиная с третьего; не помещать срезы на водяную баню.