Методические рекомендации по ускоренному определению устойчивости бактерий к дезинфекционным средствам

2. Ингредиенты и методика анализа

2.1. Дистиллированная вода (рН не ниже 6,0) - применяют для приготовления питательной среды и начальных разведений раствора дезинфекционных препаратов.

2.2. Жидкая цветная питательная среда разработана в качестве универсальной для определения чувствительности к разным дезинфектантам большинства патогенных аэробных бактерий.

Основой служит питательный бульон из панкреатического гидролизата рыбокостной муки с добавлением 0,5% глюкозы и 0,002% индикатора бромкрезолового пурпурного. С помощью раствора 1%-го NaOH рН цветной питательной среды доводят до 7,6-7,7. Среду стерилизуют в автоклаве при 120°С в течение 20 мин. Стерильная питательная среда имеет рН 7,2-7,4, окрашена в яркий сиреневый цвет. При температуре 4-6°С среда сохраняется не менее 3 лет.

Цветная питательная среда способна поддерживать рост единичных клеток эталонных культур бактерий - Echerichia coli, Staphilococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Bacillus subtilis, Bacillus cereus и других видов аэробных бактерий, ферментирующих глюкозу.

Для более прихотливых бактерий (роды Brucella, Francisella и некоторые другие) следует применять специальные цветные питательные среды.

2.3. Определение устойчивости бактериальных культур к дезинфекционным средствам

Бактериальную культуру выращивают на питательном агаре 20-24 часа при оптимальной для данного вида бактерий температуре. Микробный урожай с поверхности агара снимают шпателем и 0,85%-ным раствором натрия хлорида. В стерильных пробирках Эппендорфа или в инсулиновых флаконах готовят следующие концентрации бактерий: 1х10, 5х10 и 10х10 м. кл. в 50 мкл (на каждую концентрацию берут по 2-3 пробирки или флакона). Туда же приливают по 100 мкл цветной питательной среды, после чего сосуды переносят в термостат на 4 часа при оптимальной для данного вида бактерий температуре. Если за указанное время исходный цвет питательной среды изменится на желтый, то для данной культуры применим описанный в настоящих Методических рекомендациях способ определения устойчивости.

Анализы проводят в стерильных 96-луночных пластмассовых планшетах разового пользования с объемом лунок 200 мкл. Во все лунки вносят по 100 мкл цветной питательной среды. В первые лунки вносят по 100 мкл начального разведения раствора дезинфекционных препаратов на дистиллированной воде, равного удвоенной концентрации, рекомендованной для практики. Поэтому начальным разведением служит та концентрация, которая рекомендована для практического применения, или более низкая, если препарат в обычной концентрации неблагоприятно влияет на окраску цветной питательной среды.

На каждый дезинфекционный препарат отводят горизонтальный ряд лунок, в котором готовят с 2-кратным шагом разведения конкретного препарата в цветной питательной среде. Титрование проводят 8-канальной автоматической пружинной пипеткой со стерильными съемными наконечниками. Число дезинфекционных препаратов, включенных в испытание, соответствует числу горизонтальных рядов планшета. Можно для титрования пользоваться одноканальными пипетками.

Обязательные контроли:

1. 2 лунки с питательной средой (100 мкл), куда вносят 50 мкл испытуемой культуры бактерий (5х10 м. кл.).

2. Цветная питательная среда в объеме 150 мкл, 2 лунки.

3. Первые три разведения каждого дезинфекционного средства на цветной питательной среде по 150 мкл.

В лунки с разведениями дезинфекционных средств и контрольные лунки (кроме контроля 2) вносят по 50 мкл взвеси бактерий (5х10 м. кл.). Пластины накрывают крышками и переносят в термостат с температурой, оптимальной для данного вида бактерий. Следят за тем, чтобы жидкость в лунках не касалась крышки.