Статус документа
Статус документа

Методические указания по гигиенической оценке новых пестицидов

2.6. Изучение вредного действия пестицидов при поступлении через дыхательные пути

Задачи исследования и методические подходы

Непрерывность дыхательной функции, большая поверхность (80...90 м) альвеолярно-капиллярной сети легких и особенности структуры альвеолярных перегородок определяют значительную опасность поступления пестицидов через органы дыхания.

Цель исследований - определить смертельные, токсические и пороговые уровни воздействия пестицидов, необходимые для обоснования и разработки мер профилактики.

В случаях постоянного контакта людей с пестицидами (производство, хранение на крупных складах, централизованное протравливание семян) характер и объем исследований по установлению должны соответствовать "Методическим указаниям к постановке исследований для обоснования санитарных стандартов вредных веществ в воздухе рабочей зоны" (М., 1980).

При сохранении общих принципов объем и характер экспериментальных исследований по обоснованию , используемых в сельском хозяйстве для условий кратковременного контакта, имеет некоторые особенности.

1. Длительность хронического опыта может быть ограничена двумя месяцами.

2. Обязательным является изучение интермиттирующего действия в сравнении с монотонным на уровне надпороговой концентрации. Длительность опыта - 1-2 месяца, режим - неделя воздействия, неделя перерыв. Показатели оценивают каждую неделю при длительности опыта 1 месяц и 1 раз в 2 недели при двухмесячном эксперименте.

С учетом летучести и метода применения отдельных пестицидов научается действие паров, пыли либо гидроаэрозолей веществ.

При проведении ориентировочных опытов с летучими веществами создают концентрации пестицидов в замкнутом пространстве (эксикатор, камера) - т.н. статическое воздействие.

Токсическое действие химических веществ в полном объеме исследуют в специальных камерах для динамического воздействия, устройство которых предусматривает непрерывное поступление в камеру и удаление из нее воздуха, содержащего изучаемый пестицид*.

________________

* Ингаляционные камеры см.: Методы определения токсичности и опасности химических веществ /Под ред. И.В.Саноцкого (М., 1970); Токсикологическая оценка летучих веществ, выделяющихся из синтетических материалов /Под ред. И.М.Трахтенберга (К., 1969); Токсикометрия химических веществ, загрязняющих окружающую среду /Под ред. А.А.Каспарова и И.В.Саноцкого (М., 1986).


Воздух в камеру подается с помощью кондиционера (бытового типа УКВ-I), температура его должна составлять 25 °С, относительная влажность - 60-70%. Объем камеры с учетом минимального (трехкратный в час) воздухообмена для животных - не менее 200 л.

Подаваемый воздух предварительно проходит черва специальные устройства - пылеподатчик, микрофорсунку для генерирования гидроаэрозоля и др. Генерирование гидроаэрозолей осуществляется также с помощью дисковых распылителей. Для создания необходимых концентраций аэрозолей применяют шнековые, вибропневматические и другие пылеподатчики.

Степень дисперсности гидроаэрозолей - 2...20 мкм. Для определения размера частиц используют специальные приборы. Можно рекомендовать простой метод: раствор обычного проявителя для фотобумаги осаждают на засвеченную бумагу или фотопленку, которую можно использовать как диапозитив.

Размер частиц определяют с помощью окуляр-микрометра*.

________________

* Рацпредложение N 83 от 20.10.75 г. ВНИИГИНТОКС, В.И.Мурза, В.Е.Кривенчук, И.И.Самусенко.


Воздух из камер удаляют, используя вентиляторы высокого давления, воздуходувки и т.п. Перед выбросом в атмосферу его очищают с помощью фильтров, обеспечивающих поглощение паров, пыли и гидроаэрозоля. Скорость движения воздуха, поступающего и удаляемого из камеры, измеряется реометрами, газовыми часами и т.п.

Количество удаляемого из камеры воздуха должно быть на 2-5% больше подаваемого с тем, чтобы в камере создавалось небольшое разрежение, препятствующее проникновению химических веществ из камеры в помещение. Скорость движения воздуха в камере не должна превышать 5...10 л/мин.

Количество пестицидов в воздухе определяют химическими методами, которые должны быть избирательными и достаточно чувствительными (определение 1/2 при времени отбора - не более 30 мин). Пробы воздуха из камер отбирают с помощью аспирационных устройств (электроаспиратор и т.п.) не менее 2 раз в течение острого опыта и 2-3 раза в неделю в хроническом эксперименте. Воздух, содержащий аэрозоль либо гидроаэрозоль, протягивают через последовательно соединенные патрон с фильтром либо трубку с твердым сорбентом и поглотителем с соответствующим поглотительным раствором.

При использовании летучих растворителей (эфир, хлороформ и др.) поглотители погружают в смесь льда с водой. Для веществ с низкой летучестью достаточно протягивать воздух только через фильтр или трубку с твердым сорбентом.

Воздух протягивают со скоростью 0,5...10 л/мин. Уровень концентраций в ингаляционных камерах регулируется следующим образом:

а) паров - изменением количества и поверхности испарения веществ; подогревом (в сушильном шкафу, ультратермостате, специальных устройствах) яда с учетом температуры разложения конкретных веществ и поддержания в камерах нормальных параметров микроклимата; изменением кратности воздухообмена;

б) аэрозолей - разбавлением препаративных форм (дуст, смачивающийся порошок) инертным наполнителем; регулированием скорости вращения шнека (шнековый пылеподатчик); изменением скорости движения воздуха через вибропневматический пылеподатчик;

в) гидроаэрозолей - изменением концентраций диспергируемых растворов (водных эмульсий); изменением количества подаваемого через форсунку (дисковый распылитель) раствора в единицу времени.

Дисперсность частиц гидроаэрозоля регулируется изменением объема полости микрофорсунки и давления подаваемого воздуха, скорости вращения дискового распылителя.

После окончания эксперимента ингаляционные камеры следует дегазировать, а в процессе опыта - промывать 0,5% раствором кальцинированной соды 2 раза в неделю.

Длительность экспозиции в опытах - 4 ч в день. Эксперименты проводят на двух видах животных: белых крысах и на одном из наиболее чувствительных видов (кролики, кошки либо морские свинки).